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一、 實驗儀器與試劑

表格一：實驗儀器

表格二：試劑

二、 實驗步驟

1、組織中蛋白上清液的制備和濃度測定

把組織剪切成細小的碎片；

加入 200μL 裂解液，在勻漿機中研磨，直至裂解液中組織消失；

充分裂解后，12000rpm 離心 5min，取上清。

取部分上清蛋白用 BCA 蛋白定量試劑盒測定蛋白濃度，按如下步驟：  ①按試劑盒說明書將 A 液和 B 液以 50：1 的比例配制成工作液；

②取 2000μg/mL 的 BSA 標準品，用 PBS(pH 7.4)稀釋成 2000μg/mL、1500μg /mL、1000μg/mL、

750μg/mL、500μg/mL、250μg/mL、125μg/mL、25μg/mL、0μg/mL 共 9 個濃度梯度；

③取上清液 10μL，用 PBS 稀釋 20 倍；

④每管中加 20μL 蛋白標準品或稀釋后的上清液，再加上述工作液 0.2mL，37℃孵育 30min，

562nm 處測吸光度，記錄 OD 值；

⑤根據蛋白標準品的濃度及相應 OD 值繪制標準曲線：

根據標準方程計算樣品總蛋白濃度（mg/mL）

2、Western-Blot 檢測總蛋白中目的蛋白表達。

灌膠

①蒸餾水清洗灌膠玻璃板，豎直晾干。

②配制 13％分離膠 10mL，加 TEMED10μL、10％過硫酸銨 100μL，混勻后立即灌膠，灌至齒梳下緣 2～3mm（事先做好標記），用異丙醇封閉液面以去除氣泡并隔絕空氣，室溫靜置 45min 待膠*聚合。

③待分離膠*聚合后，傾去其頂部的去離子水，用濾紙將水吸干。

④配制 4％濃縮膠 5 mL，加 TEMED 5 μL、10％APS 50 μL，混勻立即灌膠，灌至頂部，并垂直插入 Teflon 齒梳，室溫靜置 20 min 待膠聚合。

⑤待膠*聚合后拔出梳子，將凝膠置于電泳槽中，加入電泳緩沖液，用電泳緩沖液沖洗上樣孔以去除氣泡。

電泳

①取各個處理組蛋白提取液，調整蛋白濃度為 6μg/μL，和等體積 2×上樣緩沖液混合，即為上樣液。

②將上樣液于 100℃沸水中煮沸 5min，使蛋白變性，冰上驟冷，3000 轉/min 離心 1min。

③每孔加上樣液 15μL，留一孔加 10μL 預染的 Marker。加滿電泳緩沖液，蓋上槽蓋，接通電源，先用 80v 恒壓電泳，約 20min，當指示劑溴酚藍進入分離膠后改用 110v 恒壓電泳，當指示劑到達距凝膠下端約 0.5cm 處時關閉電源，取出膠板。

轉印蛋白及免疫檢測

①在電泳即將結束前，預先將 PVDF 膜浸泡在甲醇中 15s，然后用 ddH2O 漂洗 2min，浸泡于轉移緩沖液中 5min 后開始后續操作。

②在水中撬膠，修膠后將膠浸泡于轉移緩沖液中平衡 15min。

③按黑面（負極）→海綿→濾紙→膠→PVDF 膜→濾紙→海綿→紅面（正極）的順序制備轉膜“三明治”，每層鋪好后先趕走氣泡再鋪另一層。在轉移緩沖液中制備三明治可避免氣泡的產生。

④接上正負極，按膜向正極的方向將轉移盒放入電轉儀中，加入轉膜緩沖液。

⑤將電轉儀置于冰水中，100V 恒壓轉膜 1h。

⑥轉膜結束后，快速取出 PVDF 膜，放入 5%BSA 室溫封閉 2h。

⑦取出膜，于搖床上用 TBST 洗膜 5min×3 次。

⑧孵育袋中加入 TBST 稀釋的一抗（1：500）4℃孵育過夜。

⑨TBST 洗膜 5min×3 次，辣根過氧化物酶（HRP）標記的羊抗小鼠二抗（1：3000），室溫孵育 1h。

⑩TBST 洗膜 10min×3 次。膜于化學發光檢測試劑反應至暗處出現亮條帶，取出膜，甩去多余的液體，用保鮮膜包好 PVDF 膜，暗室中用 X 膠片感光、顯影、定影。